LABORATORIO DI BIOTECNOLOGIE III
A.A. | CFU |
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2011/2012 | 8 |
Docente | Ricevimento studentesse e studenti | |
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Rita Crinelli | su appuntamento tramite e-mail o telefonicamente chiamando il n. 0722-305203 |
Assegnato al Corso di Studio
Giorno | Orario | Aula |
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Obiettivi Formativi
Il corso si propone di fornire agli studenti una panoramica sulle principali strategie per la produzione di proteine ricombinanti in E. coli prendendo in esame nello specifico le varie problematiche connesse all'espressione, estrazione e purificazione dei prodotti ricombinanti. Saranno inoltre trattati approfonditamente i principi delle tecniche analitiche che verranno utilizzate dagli studenti durante le lezioni di laboratorio.
Programma
Tecniche elettroforetiche per l'analisi di proteine
Proprietà ioniche di aminoacidi e proteine
Aspetti fisici della separazione elettroforetica
Gel di poliacrilammide
SDS-PAGE
Sistema gel/tampone di tipo discontinuo
Metodi di colorazione
Western blotting
Immunoblotting
PAGE in condizioni native
EMSA
Metodi spettrofotometrici per il dosaggio delle proteine
Assorbimento a 280 nm
Metodo Bradford
Metodo Lowry
E. coli come sistema di espressione
Scopi dell'espressione di proteine ricombinanti
Caratteristiche di un sistema di espressione
Vettori di espressione plasmidici
Sito multiplo di clonaggio e codon usage
Origine di replicazione e copie plasmidiche
I promotori forti e regolabili (promotore lac, triptofano, PL,T7)
I geni di resistenza agli antibiotici e i marcatori recessivi
Il Ribosome Binding Site
Strategie per prevenire la proteolisi in vivo
Proteasi batteriche e loro localizzazione intracellulare
Manipolazione delle condizioni di fermentazione
Ingegnerizzazione dell’ospite
Ingegnerizzazione del prodotto
Strategie per prevenire la formazione dei corpi di inclusione
Folding delle proteine e formazione dei corpi di inclusione
Manipolazione delle condizioni di fermentazione
Ingegnerizzazione dell’ospite
I ceppi “ossidanti”
Co-espressione con chaperon molecolari
Ingegnerizzazione del prodotto
La secrezione nel periplasma
Le proteine di fusione (MBP, GST, SUMO)
I tag di fusione e il tagging combinatoriale
Preparazione di un lisato batterico e tecniche di frazionamento iniziale
Crioconservazione della biomassa
Metodi di rottura delle cellule batteriche
Componenti del tampone di estrazione
Recupero di proteine bioattive dai corpi di inclusione
Solubilizzazione delle proteine dai corpi di inclusione
Metodi di refolding in vitro
Sviluppo di un protocollo di purificazione
Chiarificazione dell’estratto
Fasi e obiettivi di un protocollo di purificazione
Sviluppo di un saggio specifico
Selezione e combinazione delle tecniche di frazionamento
Resa e grado di purificazione
La cromatografia di affinità applicata alla purificazione delle proteine di fusione
La matrice
Il ligando
Il braccio spaziatore
Tecniche di eluizione
Caratterizzazione del prodotto proteico
Endotossine batteriche: struttura e implicazioni cliniche
Tecniche di rilevazione di contaminanti endotossinici
Test del coniglio
Test LAL (gel clot, cromogenico, turbidimetrico, ricombinante)
Test di rilascio delle citochine
Tecniche di eliminazione di contaminanti endotossinici
Espressione e purificazione di una proteina ricombinante: dalla teoria alla pratica di laboratorio
Preparazione delle soluzioni per SDS-PAGE e allestimento gel
Determinazione della retta di calibrazione di BSA e IgG con metodo Bradford
Terreni e soluzioni per la crescita batterica
Tamponi per l’estrazione di proteine solubili e insolubili
Crescita batterica e induzione
Rottura delle cellule ed estrazione delle proteine
Analisi SDS-PAGE degli indotti
Purificazione della proteina ricombinante tramite cromatografia di affinità
Analisi SDS-PAGE delle frazioni cromatografiche
Test LAL, metodica gel clot
Attività di Supporto
Modalità Didattiche, Obblighi, Testi di Studio e Modalità di Accertamento
- Modalità didattiche
Lezioni frontali e in laboratorio
- Obblighi
Per poter sostenere l’esame è obbligatorio seguire almeno due terzi delle ore di lezione in laboratorio.
Sono dispensati dal seguire le lezioni in laboratorio coloro che già operano in laboratori di ricerca presso strutture sanitarie o enti di ricerca. L’esenzione prevede la presentazione di certificazione attestante l’attività svolta a cura del datore di lavoro. In questo caso, per potere sostenere l’esame orale è comunque obbligatorio superare una prova pratica diretta ad accertare la capacità del candidato di utilizzare correttamente le principali strumentazioni di laboratorio, nonché di eseguire autonomamente un protocollo sperimentale.
- Testi di studio
B.R. Glick, J.J. Pasternak, Biotecnologia Molecolare, Principi e Applicazioni del DNA Ricombinante, Zanichelli.
K. Wilson, J. Walzer, Metodologia Biochimica, le Bioscienze e le Biotecnologie in Laboratorio, Raffaello Cortina Editore.
M. C. Bonaccorsi di Patti, R. Contestabile, M. L. Di Salvo, METODOLOGIE BIOCHIMICHE - Principi e tecniche per l’espressione, la purificazione e la caratterizzazione delle proteine. Casa Editrice Ambrosiana.
R. K. Scopes, Protein purification, principles and practice, Springer-Verlag.
- Modalità di
accertamento Esame orale
- Disabilità e DSA
Le studentesse e gli studenti che hanno registrato la certificazione di disabilità o la certificazione di DSA presso l'Ufficio Inclusione e diritto allo studio, possono chiedere di utilizzare le mappe concettuali (per parole chiave) durante la prova di esame.
A tal fine, è necessario inviare le mappe, due settimane prima dell’appello di esame, alla o al docente del corso, che ne verificherà la coerenza con le indicazioni delle linee guida di ateneo e potrà chiederne la modifica.
Note
« torna indietro | Ultimo aggiornamento: 05/06/2012 |