Il percorso didattico prevede la trattazione di materie “applicate", finalizzate ad ottenere un concreto inquadramento delle tecniche e metodologie utilizzate nell’ analisi dei diversi apparati dell’organismo umano e nel monitoraggio di alcuni aspetti di interesse filogenetico in organismi animali. Questo modulo si inserisce nello studio delle strumentazioni per l’analisi cellulare automatizzata, già approcciata nel I modulo di questo insegnamento, trattando tematiche e protocolli rilevanti nello studio funzionale cellulare e tissutale.

The aim of the course is to provide students with an adequate knowledge about methodologies and techniques applied to biologic analysis of different apparatus of human organism and to monitor some aspects about phylogenesis of animal organisms. This matter faces themes related with instrumentation for automatic cell analysis, dinamic and at high resolution, oriented at the study of cells and subcellular components, in part yet mentioned in the first part of the course (I module).

Overview sui processi studiati con l'impiego del citofluorimetro.Necrosi e Apoptosi, stress ossidativo e mitocondri. Il network lisosomiale. Protocolli per la preparazione e analisi citometrica dei campioni. Pathway intrinseco ed estrinseco nella morte cellulare programmata Migrazione e proliferazione leucocitaria: approccio citometrico mediante coloranti fluorescenti. La comunicazione intercellulare, microvesicles ed esosomi. Ruolo dei death receptor nella comunicazione intercellulare. Apoptosi e Comunicazione intercellulare. Protocolli per la preparazione di campioni, acquisizione e analisi dei campioni citometrici. Citotossicità e attività NK. Protocolli per la preparazione di campioni, acquisizione e analisi dei campioni. Caratteristiche biologiche e quantificazione citometrica della cellula staminale. TEST Funzionali: Burst ossidativo e attività granulocitaria. Degranulazione basofili. Protocolli citometrici relativi. Autofagia e flusso autofagico. Lysosomal storage disorders e approccio citometrico (es:Malattia di Niemann Pick)Presentazione di lavori scientifici con applicazione pratica dei protocolli presentati.

Overview on processes approached by means of cytometry. Necrosis and Apoptosis, oxidative stress and mitochondria. Lysosomal Network. Protocols for preparation and cytometric analysis of samples.
Intrinsic and extrinsic pathways in programmed cell death.Migration and proliferation of leukocytes: cytometric approach by means of fluorescent probes.
Intercellular communication, microvesicles and exosomes. Role for death receptor in intercellular communication.Apoptosis and intercellular communication.  Protocols for preparation and cytometric analysis of samples.Cytotoxicity and NK function. Protocols for preparation and cytometric analysis of samples. Biological features of stem progenitor cells and their quantification by FCM.
Functional Test: Oxidative burst and granulocyte function. Basophil degranulation and basophil degranulation test by FCM.
Autophagy and autophagic flux. Lysosomal storage disorders by Cytometric approach.(i.e. Niemann Pick disease).
Demonstration of scientific papers with practical application of the presented protocols.

Lezioni interattive in aula informatica e parti pratiche da sviluppare in laboratorio

Modalità di
accertamento

Esame fnale orale

Disabilità e DSA

Le studentesse e gli studenti che hanno registrato la certificazione di disabilità o la certificazione di DSA presso l'Ufficio Inclusione e diritto allo studio, possono chiedere di utilizzare le mappe concettuali (per parole chiave) durante la prova di esame.

A tal fine, è necessario inviare le mappe, due settimane prima dell’appello di esame, alla o al docente del corso, che ne verificherà la coerenza con le indicazioni delle linee guida di ateneo e potrà chiederne la modifica.