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LABORATORIO DI BIOTECNOLOGIE III

A.A. CFU
2007/2008 8
Docente Email Ricevimento studentesse e studenti
Sabrina Dominici

Assegnato al Corso di Studio

Giorno Orario Aula

Obiettivi Formativi

Il corso ha la finalità di fornire agli studenti le conoscenze teoriche, necessarie alla caratterizzazione biochimica ed immunologica di una proteina/antigene. Grazie all’attività pratica lo studente potrà inoltre acquisire buona padronanza delle più comuni tecniche di laboratorio a tale scopo impiegate.

Programma

1. Purificazione di una proteina d?interesse da una miscela complessa di molecole 1.1 Preparazione degli estratti cellulari; 1.2 Cromatografia: principi, limitazioni ed applicazioni: Cromatografia liquida ad alta risoluzione (HPLC), Cromatografia di gel filtrazione, Cromatografia d?affinit?, Cromatografia a scambio ionico 1.3 Solubilit? differenziale: salting-in e salting-out 1.4 Precipitazione isoelettrica 2 Caratterizzazione biochimica di una proteina 2.1 Elettroforesi: principi, limitazioni ed applicazioni : Elettroforesi su gel di poliacrilammide con sodio dodecilsolfato (SDS-PAGE), Elettroforesi in condizioni native, Gel in gradiente, Elettroforesi bidimensionale (2D-PAGE), Rivelazione, quantificazione/stima e recupero di una proteina da gel, Elettroeluizione 2.2 Sequenziamento automatico N-terminale 2.3 Determinazione dello stato redox di una proteina: Effetti dello stato redox sulla struttura e funzionalit? di una proteina, Metodi di valutazione dei gruppi sulfidrili liberi presenti in una proteina: dosaggi spettrofotometrici e mediante utilizzo di marcatori radioattivi, Identificazione dei disolfuri presenti in una proteina: spettrometria di massa 3. Purezza di un antigene 3.1 Endotossine batteriche: TEST LAL metodiche qualitative e quantitative 3.2 Metodi per la rimozione di contaminanti endotossinici da campioni 4. Caratterizzazione immunochimica di una proteina ad uso vaccinale 4.1 Produzione di anticorpi: Risposta immunitaria, studio di adeguati protocolli di immunizzazione, Anticorpi policlonali, Anticorpi monoclinali, anticorpi ricombinanti e ingenierizzazione di anticorpi 5 Purificazione e frammentazione di immunoglobuline 6 Marcatura di anticorpi: Marcatura con isotopi radioattivi, Marcatura con composti fluorescenti, Biotinilazione, Coniugazione a complessi enzimatici. 7 Avidit? / affinit? di anticorpi 8 Immunoprecipitazione 9 Dosaggi Immunologici 9.1 Western blotting e immunoblotting 9.2 Test ELISA semplice, sandwich, competitivo. 9.3 ELISA IgG isotype ed ELISPOT per la valutazione della tipologia della risposta immune Th1/Th 2 10 Sviluppo di un kit diagnostico basato su tecniche ELISA 11 Cenni di citofluorimetria

Modalità Didattiche, Obblighi, Testi di Studio e Modalità di Accertamento

Modalità didattiche
Lezione frontale; laboratorio
Testi di studio
Keith Wilson e John Walker ?Biochimica e biologia molecolare? Raffaello Cortina Editore Gregory A. Petsko Damgar Ringe ?Struttura e funzione delle proteine? Zanichelli Daan J.A. Crommelin Robert D. Sindelar ? Biotecnologie Farmaceutiche? Zanichelli
Modalità di
accertamento
Esame orale
Disabilità e DSA

Le studentesse e gli studenti che hanno registrato la certificazione di disabilità o la certificazione di DSA presso l'Ufficio Inclusione e diritto allo studio, possono chiedere di utilizzare le mappe concettuali (per parole chiave) durante la prova di esame.

A tal fine, è necessario inviare le mappe, due settimane prima dell’appello di esame, alla o al docente del corso, che ne verificherà la coerenza con le indicazioni delle linee guida di ateneo e potrà chiederne la modifica.

« torna indietro Ultimo aggiornamento: 06/07/2007


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